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Microscopía by Mind Map: Microscopía

1. Métodos metacromáticos

1.1. Amieloide, glucosaminoglucanos, gránulos de la células cebadas, mucopolisacáridos sulfatados y los ácidos nucleicos

1.2. Giemsa o Wright

1.2.1. Núcleos en azul

1.2.2. Eritrocitos en rojo

1.2.3. Cromatina y glóbulos rojos en morado

1.2.4. Gránulos de eosinófilos en rosa

1.2.5. Gránulos de neutrófilos en morado

1.2.6. Bacterias en azul oscuro

1.2.7. Núcleos de parásitos protozoarios en rojo

1.2.8. Citoplasma basófilo en linfocitos y monocitos; para los protozoarios en azul.

2. Microscopio

2.1. Es un instrumento que sirve para amplificar objetos.

2.2. Historia

2.2.1. Zacharias y Hans Jessen

2.2.1.1. 1950

2.2.1.1.1. Telescopios y lentes convergentes.

2.2.2. Galileo Galilei

2.2.2.1. 1609

2.2.2.1.1. Lentes con un lado convexo y otro cóncavo.

2.2.3. Robert Hook

2.2.3.1. 1665

2.2.3.1.1. Documentó observaciones que hizo con sus microscopios

2.2.4. Anton Von Leeuwenhoek

2.2.4.1. 1674

2.2.4.1.1. Logró la mejor magnificación en su tiempo. Dwscubrió bacterias protozoos.

2.2.5. Joseph Jakson

2.2.5.1. 1826

2.2.5.1.1. Creo lentes cromáticos para usar hondas de luz para ver mejor los objetos.

2.2.6. Ernst Abbe

2.2.6.1. 1860

2.2.6.1.1. Microscopio que era de prueba y error.

2.2.7. Ernst Ruska

2.2.7.1. 1931

2.2.7.1.1. Primer microscopio electrónico.

3. Técnicas histológicas

3.1. Pasos para obtener los mejores resultados y son:

3.1.1. Obtención de la muestra

3.1.1.1. Obtener toda la información posible del material.

3.1.1.1.1. Realizar un examen o descripción de los materiales a procesar para hacer lo correcto.

3.1.2. Fijación

3.1.2.1. Tratamiento del tejido con sustancias químicas.

3.1.2.1.1. Retardan alteraciones del tejido y lo conservan.

3.1.3. Deshidratación y aclaramiento

3.1.3.1. Se deshidrata por medio de alcohol y parafina.

3.1.3.1.1. Se utiliza Xileno, tolueno y benceno

3.1.4. Inclusión

3.1.4.1. Parafina penetra espacios intercelulares e interior de las células.

3.1.4.1.1. Sirve para realizar cortes más finos con el micrótomo.

3.1.5. Corte

3.1.5.1. Se utiliza

3.1.5.1.1. Micrótomo: rotativo, deslizamiento, concelación y crióstatico.

3.1.6. Extención

3.1.7. Montaje

3.1.8. Tinción de los cortes

3.1.8.1. Colorantes

3.1.8.1.1. Ácidos y básicos

3.1.8.1.2. Especializados

3.1.8.1.3. Sales metálicas

4. Tinciones

4.1. Métodos tricrómicos

4.1.1. Masson

4.1.1.1. Tiñe: nucleo de negro.

4.1.1.1.1. -Músculo, queratina y citoplasma en rojo.

4.1.2. Galleno

4.1.2.1. Tiñe: núcleo en azul.

4.1.2.1.1. -Fibras elásticas en magenta.

4.1.3. Gomori

4.1.3.1. Se emplea para tejidos

4.1.3.1.1. Tiñe: fibras musculares en rojo.

4.1.4. Verhoeff

4.1.4.1. Tiñe: fibras elásticas en negro.

4.1.4.1.1. Núcleos en negro.

4.1.5. Mallory

4.1.5.1. Se usan para tejidos nerviosos.

4.1.5.1.1. Tiñe: núcleos, mielina, eritrocitos en rojo brillante.

4.2. Métodos argénticos

4.2.1. Reducen nitrato de plata, se depositan en color negro.

4.2.1.1. Para membranas basales, fibras reticulares, melanina y tejidos nervioso.

4.2.1.1.1. Gros-Bielschowsky

4.2.1.1.2. Rio-Hortega y Grimelius

4.2.1.1.3. Sevier-Munger

4.2.1.1.4. Gordon-Sweet

4.3. De Luxol Fast Blue

4.3.1. Mielina en azul

4.3.2. Membrana basal, hongos y cuerpos neuronales en rosa.

4.4. NISSL

4.4.1. Células nerviosas en azul brillante.

4.4.2. Fondo azul claro.

4.5. Kluver Barrera

4.5.1. Mielina, fosfolípidos en azul

4.5.2. C. entre rosa y violeta

4.6. Métodos para Carbohidratos

4.6.1. Ácido Peyódico de SCHIFF (PAS)

4.6.1.1. Fibras reticulares y membranas basales. Hongos. Mucosustancias secretadas en (digestivo, respiratorio y genital)

4.7. De azul anciano

4.7.1. Colorante básico polivalente soluble en agua. Tiñe en azul-Cobre

4.7.1.1. Reacción con compuestos aniónicos.

4.7.1.1.1. Mucosustancias ácidas y mucinas ácidas de color azul y pH=2.5.

4.7.1.1.2. Núcleos rojos

4.7.1.1.3. Citoplasma rosa pálido, pH= 1

4.7.1.1.4. Mucosustancias sulfatadas en azul

4.7.1.1.5. Resto del tejido rosa.

4.8. Métodos para pigmentos

4.8.1. Perls

4.8.1.1. Pigmento endógeno rico en hierro- Hemosiderina.

4.8.1.2. Hierro en azul de Prusia

4.8.1.3. Fondo en rosa-rojo

4.8.2. Fontana Masson

4.8.2.1. Melanina en color negro

4.8.2.2. Gránulos negros

4.8.2.3. Núcleos y citoplasma de rosa o rojo

4.8.2.4. Lipofuscina-rojo magenta

4.8.3. Tipos de pigmentos

4.8.3.1. Artefacto

4.8.3.2. Fijar tejido precipitado

4.8.3.3. Cromo

4.8.4. Pigmentos

4.8.4.1. Dentro de célula

4.8.4.2. Hemoglobina

4.8.4.3. Melanina

4.9. Métodos para demostrar ácidos nucleicos.

4.9.1. Tejido tratado con ácido clorhídrico, ARN se degrada y ADN se mantiene

4.9.2. Cromosomas de color magenta

4.10. Para demostrar microorganismos

4.10.1. Brown Brenn

4.10.1.1. Bacterias

4.10.1.2. Células gram positivas azul-negro

4.10.1.3. Células gram negativas rosa-rojo

4.10.1.4. Citoplasma amarillo-café

4.10.1.5. Tejido conjuntivo rojo

4.10.1.6. Tejido necrótico café amarillento.

4.10.2. Ziehl Neelsen

4.10.2.1. Bacilos, ácido rápido.

4.10.2.1.1. Fuscina en solución de fenol

4.10.2.1.2. brillante

4.10.2.1.3. Otros elementos tisulares azules

4.10.3. Crocott

4.10.3.1. Hongos

4.10.3.2. 1. Oxidación del tejido y polisacáridos.

4.10.3.3. 2.-Adición de metenamina y solución de borato-buffer.

4.10.3.4. 3. Cloruro de oro para revelar la plata metálica.

4.10.3.5. 4. Triosulfato para fijar y detener la reacción.

4.10.3.6. 5. Contraste-verde

4.10.3.7. Se observan los hongos en negro y el resto en verde.

4.11. Tinción de Sudan III

4.11.1. Demostrar la presencia de grasas (lípidos y trigliceridos.

4.11.2. Grupo de colorantes indiferentes, no tienen afinidad por estructuras ácidas o básicas.

4.11.3. Colorantes para grasas son más solubles.

4.11.4. Colorantes siempre van en una mezcla de alcohol/acetona o alcohol/agua.

4.12. Estructuras de alto peso molecular