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CITOLOGIA by Mind Map: CITOLOGIA

1. Anatomia e Histologia Normal do TGF

1.1. Vulva

1.1.1. Monte de vênus, grandes e pequenos lábios, clitóris, hímen.

1.1.2. Epitélio estratificado pavimentoso queratinizado.

1.2. Vagina

1.2.1. Parede vaginal - camada mucosa interna (epitélio pavimentoso estratificado); camada muscular intermediária (músculo liso); camada adventícia externa (tecido conjuntivo denso).

1.2.2. Vestíbulo da vagina, óstio uterino externo, ectocérvix, endocérvix, canal endocervical.

1.2.3. Epitélio escamoso estratificado não queratinizado.

1.2.3.1. Camada parabasal.

1.2.3.2. Camada intermediária.

1.2.3.3. Camada superficial.

1.2.4. Camada basal.

1.3. Útero

1.3.1. Colo Uterino

1.3.1.1. Junção Escamocolunar (JEC)

1.3.1.1.1. Epitélio Glandular Endocervical

1.3.2. Cavidade Uterina

1.3.2.1. Epitélio Glandular Endometrial

1.4. Tubas Uterinas (direita e esquerda)

1.4.1. Paredes das tubas uterinas - compostas por células glandulares secretoras ou ciliadas.

1.5. Ovários (direito e esquerdo)

2. 10 mergulhos em cada recipiente, antes e depois de cada corante.

3. Citologia Normal do TGF

3.1. Células Escamosas Superficiais

3.1.1. .

3.2. Células Escamosas Intermediárias

3.2.1. .

3.3. Células Parabasais

3.3.1. .

3.4. Células Basais

3.4.1. .

3.5. Células Glandulares Endocervicais

3.5.1. Presença - demonstra que a coleta foi realizada na JEC.

3.6. Células Glandulares Endometriais

3.6.1. .

3.7. Células de Reserva

3.7.1. Estão localizadas entre a membrana basal e células glandulares - responsáveis pela manutenção do epitélio.

3.8. Lâmina Basal

3.9. Estroma

4. Coleta e Confecção de Esfregaços Citológico

4.1. Orientar paciente

4.1.1. Evitar relação sexual e uso de duchas vaginais 24 h antes da coleta.

4.1.2. Evitar uso de cremes ou pomadas vaginais nas 48 h que antecedem o exame

4.2. Material Utilizado

4.2.1. Espátula de Ayre

4.2.2. Escova endocervical

4.2.3. Espéculo vaginal

4.2.4. Lâminas de vidro com extremidade fosca

4.2.5. Fixador celular (spray ou álcool a 95%)

4.2.6. Recipiente apropriado para o transporte das lâminas.

4.3. Coleta e Confecção

4.3.1. Ectocérvix

4.3.1.1. Introduzindo todas as cerdas da escova no canal endocervical e fazer um movimento giratório de 360°.

4.3.1.1.1. Distribuir o material na metade inferior da lâmina, realizando um esfregaço fino e homogêneo, distribuído no sentido longitudinal.

4.3.1.2. Encaixar firmemente a ponta mais longa da espátula de Ayre no orifício externo do colo, fazendo um movimento rotativo de 360°.

4.3.1.2.1. Dispor a amostra no sentido transversal, na metade superior da lâmina, próximo da região fosca, previamente identificada.

4.3.2. Endocérvix

4.3.3. Fixação

4.3.3.1. Submergir a lâmina no álcool a 96% por no mínimo 20 minutos.

4.3.3.2. Borrifar a lâmina com fixador, spray ou aerossol, a uma distância de 20 cm, cobrindo totalmente o esfregaço evitando excessos.

5. Coloração de Esfregaços Citológicos

5.1. Álcool Etílico.

5.1.1. Disposto em três recipientes.

5.2. Água Destilada.

5.2.1. Disposta em dois recipientes.

5.2.1.1. 10 mergulhos após o álcool, antes da hematoxilina, e 10 mergulhos depois da hematoxilina.

5.3. Hematoxilina de Harris.

5.3.1. Disposta em um recipiente.

5.3.1.1. Deixar a lâmina mergulhada por 1 minuto.

5.3.2. Corante Alcalino - Cora núcleos e bactérias.

5.4. Orange G6.

5.4.1. Disposto em um recipientes.

5.4.1.1. Deixar a lâmina mergulhada por 2 minuto.

5.4.2. Corante Ácido - Cora citoplasma, hemácias e queratinização.

5.5. EA de Gill's

5.5.1. Disposto em um recipientes.

5.5.1.1. Deixar a lâmina mergulhada por 3 minuto.

5.5.2. Corante Alcoólico - Cora citoplasma.

5.6. Lavar a lâmina com água (destilada) corrente após mergulho em cada corante.