MUESTRAS NATURALES

Análisis de muestras naturales en microbiología

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MUESTRAS NATURALES by Mind Map: MUESTRAS NATURALES

1. EXUDADOS VAGINALES

1.1. Diagnosticar infecciones vaginales o presencia de Streptococcus agalactiae en embarazadas

1.1.1. Recogida de la muestra

1.1.1.1. Recomendaciones

1.1.1.1.1. Haber finalizado el periodo de menstruación mínimo hace 3 días.

1.1.1.1.2. No tener relaciones sexuales las 48 horas anteriores.

1.1.1.1.3. No usar tratamientos tópicos durante al menos una semana antes.

1.1.1.1.4. No hacer lavados vaginales ni utilizar desodorantes.

1.1.1.2. Procedimiento

1.1.1.2.1. 1. Lavarse las manos y la zona genital.

1.1.1.2.2. 2. Introducir la torunda por la vagina frotando por las paredes.

1.1.1.2.3. 3. Retirar la torunda y meterla en el tubo con medio de transporte.

1.1.1.3. Criterios de rechazo

1.1.1.3.1. Incorrecta identificación.

1.1.1.3.2. Muestras recibidas con toma en días anteriores.

1.1.1.3.3. Escobillones sin medio de transporte

1.1.2. Protocolo de laboratorio

1.1.2.1. Examen directo

1.1.2.1.1. Observación en fresco

1.1.2.1.2. Tinción de Gram

1.1.2.2. Cultivo

1.1.2.2.1. Medios a sembrar

1.1.2.2.2. Incubación

1.1.3. Bacterias más frecuentes

1.1.3.1. Gardnerella vaginalis

1.1.3.1.1. Bacilo

1.1.3.1.2. Vaginosis bacteriana

1.1.3.2. Streptococcus agalactiae (SGB)

1.1.3.2.1. Colonias naranjas

1.1.3.2.2. Catalasa -

1.1.3.3. Neisseria gonorrhoeae

1.1.3.3.1. Diplococos

1.1.3.3.2. Gram -

1.1.3.3.3. Oxidasa +

1.1.3.4. Chlamydia trachomatis

1.1.3.4.1. ETS

1.1.3.4.2. Gram -

1.1.4. Otros microorganismos frecuentes

1.1.4.1. Candida spp.

1.1.4.1.1. Levadura

1.1.4.1.2. Principal causa de vaginitis

1.1.4.2. Trychomonas vaginalis

1.1.4.2.1. Parásito protozoo

1.1.4.2.2. Flagelado

1.1.4.2.3. Móvil

2. HEMOCULTIVO

2.1. Para detectar bacteriemias u otras infecciones

2.1.1. Recogida de la muestra

2.1.1.1. Recomendaciones

2.1.1.1.1. Respetar el volumen adecuado

2.1.1.1.2. No utilizar EDTA, heparina o citrato.

2.1.1.2. Procedimiento

2.1.1.2.1. Frascos especiales

2.1.1.2.2. Volumen a recoger

2.1.1.2.3. 1. Punción venosa periférica

2.1.1.2.4. 2. Recogida de varios frascos

2.1.1.2.5. 3. Oxigenación de uno de los tubos con aguja.

2.1.1.2.6. 4. Incubar durante 7 días a 35-37ºC.

2.1.1.3. Criterios de rechazo

2.1.1.3.1. Identificación incorrecta.

2.1.1.3.2. Volumen insuficiente.

2.1.2. Protocolo de laboratorio

2.1.2.1. Examen directo

2.1.2.1.1. Estudio físico

2.1.2.1.2. Tinción de Gram

2.1.2.1.3. Tinción con naranja de acridina

2.1.2.2. Cultivo

2.1.2.2.1. Medios a cultivar

2.1.2.2.2. En función de los resultados se decide si hay que realizar otras siembras en medios diferentes.

2.1.2.3. Resultados

2.1.2.3.1. Positivos

2.1.2.3.2. Negativos

2.1.3. Bacterias más frecuentes

2.1.3.1. Staphylococcus aureus

2.1.3.2. Escherichia coli

2.1.3.3. Estafilococos coagulasa negativa

2.1.3.4. Klebsiella pneumoniae

2.1.3.5. Enterococcus spp.

2.1.3.6. Pseudomonas aeruginosa

2.1.3.7. Streptococcus pneumoniae

2.1.3.8. Streptococcus pyogenes

2.1.3.9. Streptococos del género viridae

2.1.4. Otros microorganismos

2.1.4.1. Candida albicans

3. UROCULTIVO

3.1. Diagnosticar infecciones urinarias

3.1.1. Recogida de la muestra

3.1.1.1. Requerimientos:

3.1.1.2. 1. Desechar el primer chorrillo

3.1.1.2.1. Mujeres: Limpiar el pliegue interno de los labios con una toallita

3.1.1.2.2. Hombres:Limpiar cabeza del pene retrayendo el prepucio

3.1.1.3. 2. Se requieren aproximadamente 10 mL

3.1.1.4. 3. El tiempo transcurrido entre su toma y su llegada al laboratorio no debe ser superior a 2 h

3.1.1.5. 4. Análisis

3.1.1.5.1. En el mismo momento al ser posible

3.1.1.5.2. De no serlo mantener a 4ºC hasta 48 horas

3.1.2. Protocolo de laboratorio

3.1.2.1. Exámen en fresco

3.1.2.2. Tinción de Gram

3.1.2.2.1. Gram

3.1.2.3. Cultivo cuantitativo

3.1.2.3.1. Siembra en agar CLED o sangre

3.1.2.4. Cultivo cualitativo

3.1.2.4.1. Siembra en McConkey o EMB

3.1.3. Bacterias frecuentes en una muestra de orina

3.1.3.1. Enterobacterias

3.1.3.1.1. Escherichia coli

3.1.3.1.2. Klebsiella spp.

3.1.3.1.3. Enterobacter spp.

3.1.3.1.4. Proteus spp.

3.1.3.1.5. Serratia spp.

3.1.3.1.6. Todas comparten las siguientes características

3.1.3.2. BNNF

3.1.3.2.1. Acinetobacter spp.

3.1.3.2.2. Pseudomonas aeruginosa

3.1.3.3. Cocos Gram +

3.1.3.3.1. Enterococcus spp.

3.1.3.3.2. Staphylococcus aureus

3.1.3.3.3. Staphylococcus epidermidis

3.1.3.3.4. Streptococos agalactiae

4. COPROCULTIVO

4.1. Detectar la presencia de determinadas bacterias en las heces que pueden ocasionar infección.

4.1.1. Recogida de la muestra

4.1.1.1. Requiere de una higiene íntima adecuada

4.1.1.2. Orinar previamente a la defecación

4.1.1.3. Uso de un recolector de heces de plástico estéril

4.1.1.3.1. Recoger una cantidad de heces de 1gr aproximadamente

4.1.1.3.2. Para el estudio parasitológico en heces

4.1.1.4. Conservar en nevera un máximo de 24 horas

4.1.2. Protocolo de laboratorio

4.1.2.1. Transporte

4.1.2.1.1. Agentes virales

4.1.2.1.2. Agentes bacterianos

4.1.2.1.3. Estudios parasitoscópicos

4.1.2.2. Examen directo

4.1.2.2.1. Estudio macroscópico

4.1.2.2.2. Examen microscopio

4.1.3. Inoculación

4.1.3.1. Emulsión de 1-2 g de heces en solución salina

4.1.3.2. Caldo Selenito

4.1.3.2.1. Eliminar flora intestinal normal

4.1.3.3. Siembra en los medios

4.1.3.3.1. Agar MacConkey

4.1.3.3.2. Agar XLD

4.1.3.3.3. Medio Cin

4.1.3.4. Pruebas bioquímicas

4.1.3.4.1. Agar Christensen

4.1.3.4.2. Agar Campy

4.1.3.4.3. Agar hierro de Kliger

4.1.3.5. Incubación

4.1.3.5.1. 24-48 horas

4.1.4. Resultados

4.1.4.1. Bacterias más buscadas en coprocultivo

4.1.4.1.1. Staphylococcus spp.

4.1.4.1.2. Bacillus cereus.

4.1.4.1.3. Escherichia coli.

4.1.4.1.4. Vibrio cholerae.

4.1.4.1.5. Shigella spp.

4.1.4.1.6. Campylobacter spp.

4.1.4.1.7. Salmonella spp.

4.1.4.1.8. Plesiomonas shigelloides.

4.1.4.1.9. Aeromonas hydrophila.

4.1.4.1.10. Vibrio parahaemolyticus.

4.1.4.1.11. Clostridium difficile.

5. MUESTRAS RESPIRATORIAS

5.1. Existe una amplia variedad, pero destacaremos las siguientes:

5.1.1. Exudado faríngeo

5.1.1.1. Recogida de la muestra

5.1.1.1.1. Recomendaciones

5.1.1.1.2. Procedimiento

5.1.1.2. Protocolo de laboratorio

5.1.1.2.1. 1. Sembrar en una placa con Agar Columbia Sangre

5.1.1.2.2. 2. Incubar a 37ºC 48 horas en atmósfera anaerobia

5.1.1.2.3. 3. Realizar una tinción Gram

5.1.1.3. Bacterias más frecuentes

5.1.1.3.1. Streptococo beta hemolítico

5.1.1.3.2. Streptococo pyógenes

5.1.1.3.3. Haemophilus influenzae

5.1.1.3.4. Streptococcus pneumoniae

5.1.1.3.5. Mycobacterium catarrhalis

5.1.1.3.6. Neisseria Meningtidis

5.1.1.4. Otros microorganismos frecuentes

5.1.1.4.1. Cándida Albicans

5.1.2. Exudado nasal

5.1.2.1. Recogida de la muestra

5.1.2.1.1. Procedimiento

5.1.2.1.2. Recomendaciones

5.1.2.1.3. Conservación

5.1.2.2. Protocolo de laboratorio

5.1.2.2.1. 1. Se realiza una siembra en superficie en cultivos Agar sangre y Agar manitol

5.1.2.2.2. 2. Incubar de 24 horas a 37ºC

5.1.2.2.3. 3. El resto de estudios dependerán del tipo de bacteria

5.1.2.3. Bacterias más frecuentes

5.1.2.3.1. Streptococcus viridans

5.1.2.3.2. Staphylococcus aureus

5.1.2.3.3. Staphylococcus coagulasa negativa

5.1.2.3.4. Corynebacterium spp

5.1.3. Esputo

5.1.3.1. Recogida de la muestra

5.1.3.1.1. Recogida de muestra para cultivo

5.1.3.1.2. Recogida de muestra para micobacterias

5.1.3.2. Protocolo de laboratorio

5.1.3.2.1. Tinción directa

5.1.3.2.2. Cultivo

5.1.3.2.3. Observación macroscópica de la muestra

5.1.3.3. Bacterias más frecuentes

5.1.3.3.1. Staphylococcus aureus

5.1.3.3.2. Enterobacterias

5.1.3.3.3. Bacilos gram -

5.1.3.3.4. Bacilos gram- no fermentadores

5.1.3.3.5. Morazella catarrhalis

5.1.3.3.6. Hamophius influenzoe

5.1.3.3.7. Pseudomonas

5.1.3.3.8. Streptococcus pneuminioe