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EXUDADO FARÍNGEO by Mind Map: EXUDADO FARÍNGEO

1. ENFERMEDADES

1.1. RINITIS

1.1.1. Raros

1.2. FARINGITIS O AMIGDALITIS

1.2.1. Streptococcus pyogenes. Estreptococos beta hemolíticos grupos B,C,G. Neisseria gonorrhoeae. Arcanobacterium haemolyticum.

1.3. SINUSITIS

1.3.1. Streptococcus pneumoniae Haemophilus influenzae Moraxella catarrhalis Streptococcus pyogenes Bacterias anaeróbicas

1.4. EPIGLOTITIS

1.4.1. Haemophilus influenzae serotipo b

2. PROCEDIMIENTO

2.1. INSPECCIÓN DE LA FARINGE

2.1.1. Ubicar al paciente en una posición cómoda y con buena iluminación, deprimir la lengua con el baja lengua, visualizar la fosa amigdalina y faringe en busca de exudado posterior, presencia de pseudomembrana o placas.

2.2. INDICAR

2.2.1. Abra la boca y que pronuncie un largo “ah”, el cual sirve para elevar la úvula y evitar las náuseas.

2.3. INTRODUCIR

2.3.1. El hisopo y frotar enérgicamente ambas amígdalas y la pared posterior de la faringe con movimientos de barrido.

2.4. RETIRAR

2.4.1. El hisopo cuidando de no tocar las paredes laterales de orofaringe, úvula, lengua, encías y dientes.

2.5. EXTENDER

2.5.1. La muestra con suaves movimientos sobre la superficie de los portaobjetos para realizar los frotis que serán teñidos al Gram y con la técnica de Hansel.

2.6. OBTENER

2.6.1. Un segundo hisopado de fauces para la siembra en AS de carnero, siguien- do la técnica de estriado sobre superficie, realizando siembras de profundidad con el asa para la detección de hemolisinas estreptocócicas

2.7. INCUBAR

2.7.1. El agar sangre a 36°C, en condiciones de 5-7% CO2, por 24-72 horas.

3. MEDIOS DE CULTIVO

3.1. AGAR SANGRE

3.2. CALDO TOOD-HEWITT

3.3. AGAR MANITOL SALADO

3.4. En caso de ser necesario, la muestra se podrá transportar en medio de STUART o AMIES, realizando el cultivo de la misma en el menor tiempo posible (menos de 2 horas).