1. Contexto regional
1.1. (2017 Fonseca - Guajira. Araujo) Hernàndez. (2018) Vidal, D. R. A., Benítez, R. E. H., & Guerrero, J. V.
1.1.1. Gloeocapsa sp, Oscillatoria spy Anabaena sp. Alto contenido de nitrogeno vs Fertilizante de Urea, en las plantas de maiz, Ajì, Arroz y frijol.
1.2. (2017 Barran quilla ) Pedroza Carmen Romeros y ordus,
1.2.1. aislamiento de microorganismos lipolíticos a partir de efluentes industriales contaminados con aceites vegetales, la evaluación de su actividad en condiciones variables de pH, temperatura, e identificación de la cepa con mayor actividad enzimática, Serratia marcescens.
2. Contexto Internacional
2.1. (2018 China) Win, Baronen, Secundo y Fu.
2.1.1. Recuperacion de suelo y platas.
2.2. (2016 India) Singh, J. S., Kumar, A., Rai, A. N., & Singh, D. P.
2.2.1. Producción de biomasa cianobacteriana para biocombustibles, suplementos alimenticios ) y biofertilizantes
2.3. (2017 India) M. Grzesik, Romanowska-Duda & H. M. Kalaji.
2.3.1. Triple biofertilización foliar con células intactas de Microcystis aeruginosa MKR 0105, Anabaena sp. PCC 7120 y Chlorella sp. Mejora significativamente el rendimiento fisiológico y el crecimiento de las plantas fertilizadas con un fertilizante sintético YaraMila Complex
2.4. (2017 Barran quilla ) Pedroza Carmen Romeros y ordus,
2.4.1. aislamiento de microorganismos lipolíticos a partir de efluentes industriales contaminados con aceites vegetales, la evaluación de su actividad en condiciones variables de pH, temperatura, e identificación de la cepa con mayor actividad enzimática, Serratia marcescens.
2.5. (2014 Ecuador) Avendaño, Pérez, & Rodríguez.
2.5.1. Su aplicación en biotecnología agrícola permite ampliar el espectro de microorganismos utilizados como acondicionadores de suelos
2.6. (2016 Perú) Becerra Gutiérrez, L. K., & Horna Acevedo, M. V
2.6.1. Aislamiento de microorganismos productores de biosurfactantes y lipasas a partir de efluentes residuales de camales y suelos contaminados con hidrocarburos
2.7. (2014 Ecuador) Martínez Pérez, R. E
2.7.1. Anabaena sp. y Chamydomonas sp. resultaron los taxa con mayor adaptabilidad para mantenerse viables en el suelo, puesto que estuvieron presentes sobre el sustrato a lo largo de todo el ensayo. Además demostraron una relación biológica entre ellas.
2.8. (2012 India) Prasanna, R., Joshi, M., Rana, A., Shivay, Y. S., & Nain, L.
2.8.1. El potencial de fijación de nitrógeno se registró en los tratamientos que involucran la combinación de cepas bacteriano-cianobacterianas.
2.9. (2017, España) Rengel
2.9.1. Caracterizar la respuesta del metabolismo del nitrógeno al estrés redox generado por el H2O2 en Synechocystis en base a los niveles del intermediario metabólico 2-oxoglutarato
2.10. (2014, India) Singh, Khattar, & Ahluwalia
2.10.1. La utilización de los biofertilizantes a base de cianobacterias no solo proporcionarán beneficios económicos sino que también protegerán nuestro medio ambiente, la salud humana y la sostenibilidad de los ecosistemas naturales
2.11. (2018 Guayaquil) Guevara Villalta., & Villacreses Reyes.
2.11.1. Este proyecto se cultivó a escala de laboratorio la cianobacteria Arthrospira sp. con residuos de tilapia para la obtención de biomasa, donde se evaluó el crecimiento por conteo celular y clorofila a, al final se analizó el contenido proteico, lipídico y de carbohidratos
2.12. (2014 Argentina) Giordanino, M. V. F.
2.12.1. los organismos acuáticos utilizan diferentes mecanismos para evadir o contrarrestar los efectos negativos de RUV como la Reparación enzimática del daño y síntesis de compuestos fotoprotectores.
2.13. (2017, Costa Rica) Corrales, M., Villalobos, K., Rodríguez, A., Muñoz, N., & Umaña.
2.13.1. El aprovechamiento de cianobacterias como recurso biológico para prácticas en agricultura y otros, existe la necesidad de una rápida identificación y caracterización de taxones capaces de adaptarse a condiciones ambientales.
2.14. (2017 Cuba) Carballo, M. E., Chicapa, D. N., Martínez, A., Salgado, I., Pérez, L., Cruz, M., ... & Garza
2.14.1. El ajuste de factores como el pH y la temperatura determina las mejores condiciones ambientales para la actividad lipolítica microbiana y propicia incrementos en la producción de lipasas, dependiendo de la cepa bacteriana y de la cinética de producción
2.15. (2016 Ecuador) Almeida
2.15.1. Diseñar estrategias tecnologicas para inocular los consorcios de cianobacterias de suelos con cultivos extensivos y suelos erosionado
3. Contexto Nacional
3.1. (2017, Sucre) Montes Hernandez
3.1.1. Producción agrícola a través de una parcela demostrativa y productiva de ají dulce (Capsicum annuum), como nueva alternativa de producción para los agricultores .
3.2. (2014, Medellin) Hurtado y Polania
3.2.1. as evaluaciones microscópicas de cianobacterias son lábiles a errorres en la identificación de taxones, lo cual depende en gran medida de la experiencia del investigador.
3.3. (2016, Bogota) Edilene Ramírez, Sixta T. Martínez
3.3.1. Se aconsejó una metodología sencilla y poco contaminante que permite la extracción de las cuatro enzimas estudiadas en un único paso y así determinar comparativamente niveles de actividad.
3.4. (2016, Boyaca) Viteri Florez, Castillo Guerra, & Viteri Rosero
3.4.1. Los bosques nativos representan la mayor fuente de bacterias celulolíticas. La capacidad celulolítica de dichas bacterias es muy variable.
3.5. (2016 Yopal) Rodas
3.5.1. En este estudio fueron recuperados aislados bacterianos productores de enzimas extracelulares para la degradación de compuestos orgánicos tales como degradación de compuestos orgánicos tales como proteínas, polisacáridos y lípidos.