Técnicas Parasitoscópicas Viviana Rafaela Carmona Torres 6IM7

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Técnicas Parasitoscópicas Viviana Rafaela Carmona Torres 6IM7 por Mind Map: Técnicas Parasitoscópicas Viviana Rafaela Carmona Torres 6IM7

1. Flotación

1.1. Willis

1.1.1. Concentración por flotación espontanea

1.1.1.1. Útil para el hallazgo de formas parasitarias con baja densidad

1.1.1.2. No es útil para Cestodos y Trematodos

1.1.2. Cualitativa

2. Directo en fresco

2.1. Cualitativo

2.2. Trofozoitos

2.2.1. En fase móvil de alimentación, daño

2.3. Parásitos

2.3.1. Giardia lamblia

2.3.1.1. Patología

2.3.1.1.1. Giardiasis

2.3.1.1.2. Giardiosis

2.3.1.1.3. Lambliasis,etc.

2.3.1.2. Microhabitat

2.3.1.2.1. Intestino delgado

2.3.1.3. Protozoo flagelado

2.3.1.3.1. Perteneciente al orden Diplomonadida.

2.3.1.4. Morfología

2.3.1.4.1. Trofozoíto o forma móvil

2.3.1.4.2. Quiste

2.3.2. Entamoeba histolytica

2.3.2.1. Patología

2.3.2.1.1. Amebiasis

2.3.2.1.2. Disentería amebiana

2.3.2.1.3. Entamoebosis

2.3.2.1.4. Amebosis

2.3.2.1.5. Amibiasis,etc.

2.3.2.2. Microhabitat

2.3.2.2.1. Intestino grueso

2.3.2.3. Protozoo

2.3.2.3.1. Pertenece al filo Sarcomastigophora.

2.3.2.4. Morfología

2.3.2.4.1. Trofozoito

2.3.2.4.2. Prequiste

2.3.2.4.3. Quiste

2.3.3. Balantidium coli

2.3.3.1. Patología

2.3.3.1.1. Balantidiasis

2.3.3.1.2. Pared quistica resistente

2.3.3.2. Microhabitat

2.3.3.2.1. Intestino grueso

2.3.3.3. Protista ciliado

2.3.3.3.1. Único miembro de la familia Balantiididae

2.3.3.4. Morfología

2.3.3.4.1. Trofozoito

2.3.3.4.2. Quiste

3. Flotación

3.1. Cualitativo

3.2. Concentración por flotación centrifugacion

3.2.1. FAUST

3.2.2. Diferencia de densidades

3.3. Útil para el diagnostico de

3.3.1. Quistes de protozoarios

3.3.2. Larvas

3.3.3. Huevos de helmintos

3.4. Parásitos

3.4.1. Entamoeba histolytica

3.4.1.1. Patología

3.4.1.1.1. Amebiasis

3.4.1.1.2. Disentería amebiana

3.4.1.1.3. Entamoebosis

3.4.1.1.4. Amebosis

3.4.1.1.5. Amibiasis,etc.

3.4.1.2. Microhabitat

3.4.1.2.1. Intestino grueso

3.4.1.3. Protozoo

3.4.1.3.1. Pertenece al filo Sarcomastigophora.

3.4.1.4. Morfología

3.4.1.4.1. Trofozoito

3.4.1.4.2. Prequiste

3.4.1.4.3. Quiste

3.4.2. Balantidium coli

3.4.2.1. Patología

3.4.2.1.1. Balantidiasis

3.4.2.2. Microhabitat

3.4.2.2.1. Intestino grueso

3.4.2.3. Protista ciliado

3.4.2.3.1. Único miembro de la familia Balantiididae

3.4.2.4. Morfología

3.4.2.4.1. Trofozoito

3.4.2.4.2. Quiste

3.4.3. Helminto

3.4.3.1. Nematelmintos

3.4.3.1.1. Redondos

3.4.3.1.2. Pluricelulares

3.4.3.1.3. Órganos y sistemas

3.4.3.1.4. Hembras y machos

3.4.4. Ascaris lumbricoides

3.4.4.1. Patología

3.4.4.1.1. Ascariasis

3.4.4.1.2. Ascariosis, etc.

3.4.4.2. Microhabitat

3.4.4.2.1. Intestino delgado

3.4.4.3. Nematodo

3.4.4.4. Morfología

3.4.4.4.1. Fase adulta

3.4.4.4.2. Fase de huevecillo

3.4.4.4.3. Fase larva

3.4.5. Enterobius vermicularis

3.4.5.1. Helminto

3.4.5.1.1. Nematelminto

3.4.5.2. Patología

3.4.5.2.1. Oxiuriasis

3.4.5.2.2. Enterobiasis, etc.

3.4.5.3. Microhabitat

3.4.5.3.1. Intestino grueso

3.4.5.4. Pequeño nematodo

3.4.5.5. Morfología

3.4.5.5.1. Adulto

3.4.5.5.2. Huevo

3.4.6. Hymenolepis nana

3.4.6.1. Helminto

3.4.6.1.1. Platelminto

3.4.6.2. Patología

3.4.6.2.1. Himenolepiasis

3.4.6.3. Microhabitat

3.4.6.3.1. Intestino delgado

3.4.6.4. Céstodo

3.4.6.5. Morfología

3.4.6.5.1. 2 - 4 cm

3.4.6.5.2. Está constituida por tres regiones

4. Sedimentacion

4.1. Charles

4.1.1. Cualitativo

4.1.2. Útil para el diagnostico de

4.1.2.1. Huevecillos de trematodos

4.1.3. Parásitos

4.1.3.1. Ascaris lumbricoides

4.1.3.1.1. Patología

4.1.3.1.2. Helminto

4.1.3.1.3. Microhabitat

4.1.3.1.4. Nematodo

4.1.3.1.5. Morfología

4.1.4. Enterobius vermicularis

4.1.4.1. Helminto

4.1.4.1.1. Nematelminto

4.1.4.2. Patología

4.1.4.2.1. Oxiuriasis

4.1.4.2.2. Enterobiasis, etc.

4.1.4.3. Microhabitat

4.1.4.3.1. Intestino grueso

4.1.4.4. Pequeño nematodo

4.1.4.5. Morfología

4.1.4.5.1. Adulto

4.1.4.5.2. alulas

4.1.4.5.3. Huevo

4.1.5. Fasciola hepatica

4.1.5.1. Helminto

4.1.5.1.1. Platelminto

4.1.5.2. Erratico

4.1.5.3. Patología

4.1.5.3.1. Fascioliasis

4.1.5.3.2. Fasciolosis

4.1.5.4. platelminto trematodo (duela)

4.1.5.4.1. de la subclase Digenea

4.1.5.5. Mcicrohabitat

4.1.5.5.1. Hígado

4.1.5.6. Morfología

4.1.5.6.1. Simetría bilateral

4.1.5.6.2. Forma de hoja

4.1.5.6.3. Posee unas ventosas de fijación en

4.1.5.6.4. El tubo disgestivo no está muy desarrollado

4.1.5.6.5. Disponen de tegumento y musculatura para

4.1.6. Ascaris lumbricoides

4.1.6.1. Ascaris infertil

4.1.6.1.1. Patología

4.1.6.1.2. Microhabitat

4.1.6.1.3. Nematodo

4.1.6.1.4. Morfología

4.2. Ritchie

4.2.1. Por centrifugacion

4.2.2. Cualitativo

4.2.3. Útil para el diagnostico de

4.2.3.1. Huevecillos de trematodos

4.2.4. Parásitos

4.2.4.1. Fasciola hepatica

4.2.4.1.1. Helminto

4.2.4.1.2. Erratico

4.2.4.1.3. Patología

4.2.4.1.4. platelminto trematodo (duela)

4.2.4.1.5. Mcicrohabitat

4.2.4.1.6. Morfología

4.2.4.2. Ascaris lumbricoides

4.2.4.2.1. Ascaris infertil

4.2.4.3. Strongyloides stercoralis

4.2.4.3.1. Helminto

4.2.4.3.2. Facultativo

4.2.4.3.3. Patología

4.2.4.3.4. Microhabitat

4.2.4.3.5. Morfologia

4.2.4.4. Taenia saginata

4.2.4.4.1. Helminto

4.2.4.4.2. Patología

4.2.4.4.3. Microhabitat

4.2.4.4.4. Morfología

4.2.4.5. Taenia solium

4.2.4.5.1. Helminto

4.2.4.5.2. Patología

4.2.4.5.3. Microhabitat

4.2.4.5.4. Morfología

5. Técnicas cuantitativas

5.1. Kato y Miura

5.1.1. Sensible y sencillo

5.1.2. Útil para detectar

5.1.2.1. Huevecillos de helmintos

5.1.3. Parásitos

5.1.3.1. Necator americanus

5.1.3.1.1. Helminto

5.1.3.1.2. Patología

5.1.3.1.3. Microhabitat

5.1.3.1.4. Morfología

5.1.3.2. Trichuris trichura

5.1.3.2.1. Nematodo del orden Trichurida

5.1.3.2.2. Patología

5.1.3.2.3. Microhabitat

5.1.3.2.4. Morfología

5.2. Stoll

5.2.1. Dilucion

5.2.2. Ampliamente experimentado

5.2.3. No requiere centrifuga

5.3. Ferreira

5.3.1. Concentración por flotación centrifugacion

5.3.2. Requiere material y equipo especial

6. Técnicas especiales

6.1. Técnica de Graham

6.1.1. Útil para la deteccion de

6.1.1.1. Enterobius vermicularis

6.1.1.1.1. Helminto

6.1.1.1.2. Patología

6.1.1.1.3. Microhabitat

6.1.1.1.4. Pequeño nematodo

6.1.1.1.5. Morfología

6.2. Amiba en fresco

6.2.1. Útil para la diferenciación de amibas

6.3. Tamizado de heces

6.3.1. Útil para la detección de progloditos de tenias

6.4. Baermann

6.4.1. Concentración por termotrupismo

6.4.2. Útil para la detección de larvas

6.5. Cultivo Harada-Mori

6.5.1. Especifico para la obtención de larvas

6.5.2. Y para la diferenciación de especies

6.6. Xenodiagnostico

6.6.1. Útil para la detección de Tripanosomiasis

7. Serologicas

7.1. Gota gruesa

7.2. Diagnostico de enfermedades

7.2.1. causadas por parásitos sanguíneos

7.2.1.1. Malaria

7.2.1.2. Mal de chagas

7.2.1.3. Plasmodium

7.3. Parásitos

7.3.1. Plasmodium vivax

7.3.1.1. Protozoario

7.3.1.2. Patología

7.3.1.2.1. La malaria o paludismo

7.3.1.3. Microhabitat

7.3.1.3.1. Eritrocitos

7.3.1.4. Morfología

7.3.1.4.1. Trofozoito

7.3.1.4.2. Esquizonte

7.3.1.4.3. Gametocito

7.3.2. Toxoplasma gondii

7.3.2.1. Protozoario

7.3.2.2. Patología

7.3.2.2.1. Toxoplasmosis congénita

7.3.2.3. Microhabitat

7.3.2.3.1. Eritrocitos

7.3.2.4. Morfología

7.3.2.4.1. Taquizoítos

7.3.2.4.2. Bradizoítos

7.3.2.4.3. Quistes tisulares