1. Analyses
1.1. Comparer avec données historiques
1.2. Hématologie
1.2.1. Hémato
1.2.1.1. EDTA
1.2.1.2. 500µL
1.2.1.3. Formulele sanguine
1.2.2. Coag
1.2.2.1. Citrate
1.2.2.2. 1000 µL
1.2.2.3. Présence ou absence de Fibrine
1.2.3. Bioch
1.2.3.1. Serum
1.2.3.2. 1100 µL
1.2.3.3. Présence ou absence hémolyse
1.3. Hormono ?
2. Procédures
2.1. Implantation
2.2. Anesthésie
2.2.1. 2 minutes en exposition corporellle
2.2.2. 5% Isoflurane
2.3. Signes cliniques
2.3.1. Tous les jours
2.3.2. Avant prélèvement
2.3.3. 15 min après prélèvement
2.3.4. après-midi du prélèvement
2.4. Pesée
2.4.1. Avant prélèvement
2.4.2. lendemain du prélèvement
2.4.3. Surlendemain du prélèvement
2.4.4. à suivre si perte sur les 3 jours
2.5. Prélèvement sanguin
2.5.1. Renseignement des paramètres Utilisés
2.5.1.1. Outil de piqure
2.5.1.2. Anesthésie ou non
2.5.1.3. Rasage ou non
2.5.2. Evaluation de la performance
2.5.2.1. Volume prélevé
2.5.2.2. Nombre de pics pour sortir du sang
3. DAP
3.1. BEA
3.1.1. Points limites
3.1.2. 3R
3.2. Directrice d'étude
3.3. Ministère
3.4. Comité d'éthique
3.5. Commande d'animaux
3.5.1. Détermination du nombre et de l'âge des animaux en fonction des études qui nécessitent les prélèvement
4. Animaux
4.1. 8 semaines à réception
4.2. RATS
4.2.1. Mâles
4.2.1.1. 10 le 06/03
4.2.1.2. 10 le 26/03
4.2.2. Femellles
4.2.2.1. 10 le 06/03
4.2.2.2. 10 le 26/03
4.3. Souris ?
5. Méthodes
5.1. Technique
5.1.1. Contention
5.1.1.1. Bras derrière le dos et index en crochet pour la tête
5.1.1.2. Prise de la peau type gavage
5.1.2. Piqure
5.1.2.1. Visualiser l'épi
5.1.2.2. Localiser point de piqure
5.1.2.3. Piquer à profondeur raisonable
5.2. Plan d'étude
5.2.1. tests sur 20 animaux
5.2.1.1. Changement de paramètres
5.2.1.2. 6 mâles et 4 femelles le mardi
5.2.1.3. 4 mâles et 6 femelles le jeudi
6. Objectifs
6.1. Geste maitrisé
6.1.1. Point de prélèvement plus accessible
6.1.2. Un seul technicien
6.1.3. Facilité technique
6.2. 2,6 mL à prélever
6.3. Qualité de sang
6.3.1. Pas de pollution par salive ou farine
6.3.2. Comparable à sublinguale et sinus
6.4. Bien-être animal
6.5. Animal vigil
6.6. Materiel défini
7. Matériel
7.1. Aiguilles
7.1.1. 18G,(19G),20G,21G,23G
7.2. Lancettes
7.2.1. 5mm, 5,5mm, 6mm, 7mm, 8 mm
7.3. Table anesthésie
7.3.1. Oxygène + Isoflurane
7.3.2. Cuve/Masque
7.4. Tubes
7.4.1. 0,5mL + EDTA
7.4.2. 1mL + Citrate
7.4.3. 1,1mL + Gel séparateur
7.5. Compresse
7.6. Tondeuse
7.7. Pristima
7.8. EPI
7.8.1. Tenue
7.8.2. Casaque
7.8.3. Gants
7.8.4. Masque FFP3
7.8.5. Lunettes de protection
7.8.6. Charlotte
8. Résultats possibles
8.1. Devenir de la technique
8.1.1. Remplacement de la sublinguale et du sinus pour toutes les études et tous les volumes
8.1.2. Remplacement de la sublinguale uniquement pour toutes les études
8.1.3. Remplacement de la sublinguale pour certaines études et/ou certains volumes
8.1.4. Echec du projet
8.2. Application de la technique
8.2.1. Volume max prélevé vigil et sans rasage
8.2.2. Volume max prélevé vigil
8.2.3. Volume max prélevé anesthésié
8.2.4. Volume partiellement prélevé
8.2.5. Echec du projet