1. Fundamenta-se na capacidade da solução saturada de cloreto de sódio ou açúcar para fazer flutuar ovos de helmintos considerados leves.
2. Eficaz na dentificação de ovos de densidade específica baixa.
3. Hoffman
3.1. Fundamenta-se no princípio da sedimentação espontânea em água.
3.2. Eficaz na pesquisa de cistos de protozoários, ovos e larvas de helmintos.
3.3. Amostra
3.3.1. Material fecal não preservado (fezes frescas).
3.4. Vantagens
3.4.1. Necessidade mínima de vidraria;
3.4.2. Dispensável o uso de reagentes e da centrifugação.
3.5. Desvantagem
3.5.1. Grande quantidade de detritos fecais no sedimento.
3.6. Principais parasitos diagnosticados.
3.6.1. Ancylostoma spp.
3.6.2. Strongyloides spp.
3.6.3. Ascaris lumbricoides.
3.6.4. Entamoeba coli.
3.6.5. Endolimax nana.
3.6.6. Entamoeba histolytica.
3.6.7. Entamoeba dispar.
4. Kato-Katz
4.1. Fundamenta-se na contagem de ovos de helmintos em lâmina após o peneiramento e contato com substância conservadora.
4.2. Eficaz na avaliação da carga parasitária de Schistosoma mansoni.
4.3. Amostras
4.3.1. Material fecal não preservado.
4.4. Vantagem
4.4.1. Uso de significativa porção de fezes, examinada sem o emprego de outros procedimentos de concentração.
4.5. Desvantagens
4.5.1. Ineficaz para pesquisa ovos de helmintos e cistos de protozoários em fezes diarreicas.
4.6. Principais parasitos diagnosticados.
4.6.1. Ascaris lumbricoides;
4.6.2. Trichuris trichiura;
4.6.3. Schistosoma mansoni.
5. Graham - método da fita gomada
5.1. Fundamenta-se na utilização da fita gomada na apreensão de estágios evolutivos de parasitos localizados na região perianal.
5.2. Eficaz na pesquisa de ovos de parasitas.
5.2.1. Coletar algumas horas após o paciente ter se deitado, ou pela manhã, antes de defecar ou banhar-se.
5.2.2. Realizar coleta em dias consecutivos.
5.3. Desvantagem
5.3.1. Pesquisa de parasitas e estruturas encontradas apenas nas fezes.
5.4. Principais parasitos diagnosticados.
5.4.1. Enterobius vermicularis.
5.4.2. Taenia spp.
6. Tamisação
6.1. Fundamenta-se em emulsionar as fezes com água e coar a emulsão com peneira metálica.
6.2. Eficaz na pesquisa de proglotes de tênias e vermes adultos.
6.3. Vantagem
6.3.1. Demonstração e colheita de pequenos helmintos, de proglotes e de escóleces.
6.4. Desvantagens
6.4.1. Ineficaz na pesquisa de ovos de helmintos e cistos de protozoários.
6.5. Principais parasitos diagnosticados (verme adulto).
6.5.1. Ascaris lumbricoides
6.5.2. Enterobius vermicularis
6.5.3. Proglotes de tênias.
6.5.4. Trichuris trichiura
6.5.5. Ancilostomídeos
6.5.6. Hymenolepis nana
7. Ritchie
7.1. Fundamenta-se no princípio da centrifugo-sedimentação pela formalina-éter ou centrifugo-sedimentação pela formalina-acetato de etila.
7.2. Eficaz no diagnóstico de ovos, larvas e cistos de helmintos e protozoários
7.3. Amostra
7.3.1. Material fecal preservado pela solução de formaldeído a 10%
7.4. Vantagem
7.4.1. Separa detritos e gorduras fecais, deixando o sedimento limpo
7.5. Desvantagem
7.5.1. Uso do éter etílico e formaldeído, reagentes toxicológicos para a saúde ambiental e ocupacional
7.6. Principais parasitos diagnosticados
7.6.1. Ancylostoma sp
7.6.2. Hymenolepis sp
7.6.3. Ascaris sp
7.6.4. Trichuris trichiura
8. Willis
8.1. Amostra
8.1.1. Material fecal não preservado.
8.2. Desvantagem
8.2.1. Não recomendado para protozoários de ovos inférteis (Ascaris Lumbricoides), ovos de trematódeos (Clonorchis e o Heterophyes) ou E. vermicularis.
8.3. Principais parasitos diagnosticados.
8.3.1. Ancilostomídeos.
8.3.2. Trichostrongylus orientalis.
8.3.3. Trichuris trichiura.
9. Baermann-Moraes
9.1. Fundamenta-se no princípio do termo hidrotropismo positivo das larvas de nematoides.
9.2. Eficaz na identificação de larvas de S. stercoralis
9.3. Amostra
9.3.1. Material fecal não preservado.
9.4. Desvantagem
9.4.1. Ineficaz na identificação de ovos e cistos;
9.5. Principais parasitos diagnosticados
9.5.1. Strongyloides stercoralis.
9.5.2. Ancilostomídeos.
9.5.3. Enterobius vermiculares.
10. Rugai
10.1. Fundamenta-se no princípio do termo hidrotropismo positivo das larvas de nematoides.
10.2. Eficaz na pesquisa de larvas.
10.3. Amostra
10.3.1. Material fecal não preservado.
10.4. Desvantagens
10.4.1. Não identifica ovos e cistos.
10.5. Principais parasitos diagnosticados
10.5.1. Strongyloides stercoralis.
10.5.2. Ancilostomídeos
11. Faust
11.1. Fundamenta-se no princípio da centrífugo-flutuação em solução de sulfato de zinco.
11.2. Eficaz no diagnóstico de cistos de protozoários e de ovos e larvas de helmintos.
11.3. Amostra
11.3.1. Material fecal não preservado
11.3.2. Material fecal preservado pela solução de formaldeído a 10%.
11.4. Desvantagem
11.4.1. Ovos grandes de trematódeos, de cestóides e inférteis de A. lumbricoides não são concentrados.
11.4.2. Imprópria para espécimes fecais que contenham grande quantidade de gorduras.
11.5. Principais parasitos diagnosticados
11.5.1. Ancylostoma sp
11.5.2. Enterobius vermiculares.
11.5.3. Trichuris trichiura.