Técnicas Histológicas

mapa mental etapas técnicas histológica

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Técnicas Histológicas por Mind Map: Técnicas Histológicas

1. PEÇAS CIRÚRGICAS

2. Coleta

2.1. AMOSTRAS DE ORGANISMO VIVO OU MORTO

2.1.1. RETIRADA DE PARTE DOS TECIDOS

2.1.1.1. NECRÓPSIA

2.1.1.2. BIÓPSIAS

3. Fixação

3.1. PRESERVAÇÃO DOS TECIDOS

3.1.1. MANTER AS BIOMACROMOLÉCULAS O MAIS PRÓXIMO DA SITUAÇÃO "IN VIVO"

3.1.2. EVITAR AUTÓLISE E PROLIFERAÇÃO BACTERIANA

3.1.2.1. FIXAÇÃO FÍSICA

3.1.2.1.1. AQUECIMENTO

3.1.2.1.2. RESFRIAMENTO

3.1.2.2. FIXAÇÃO QUÍMICA

3.1.2.2.1. AÇÃO DE AGENTES QUÍMICOS

3.2. PARAR O METABOLISMO CELULAR

3.3. PRESERVAR A IDENTIDADE DAS CÉLULAS

3.4. MELHORAR A DIFERENCIAÇÃO ÓPTICA

3.5. PRESERVAR ANTÍGENOS

4. Clivagem

4.1. REDUÇÃO DE TAMANHO E ESPESSURA DOS FRAGMENTOS FIXADOS (CORTES UNIDIRECIONAIS)

4.1.1. PENETRAÇÃO DO FIXADOR E MELHOR DIFUSÃO DOS REAGENTES

4.1.1.1. RETIRA A AMOSTRA DO FIXADOR E PROCEDE A LAVAGEM ADEQUADA

4.2. Descalcificação

4.2.1. IMERSÃO DO TECIDO ÓSSEO EM DESCALCIFICADORES, SOLUBILIZANDO O CÁLCIO

4.2.1.1. ÁCIDOS FRACOS

4.2.1.1.1. EM TECIDOS DE MATRIZ ÓSSEA MENOS DENSA

4.2.1.2. ÁCIDOS FORTES

4.2.1.2.1. EM TECIDOS DE MATRIZ ÓSSEA MAIS DENSA; COM AÇÃO RÁPIDA MAS CAUSA DANOS AO TECIDO

4.2.1.3. HISTOQUÍMICOS

4.2.1.3.1. EDTA - NÃO CAUSA DANOS AO TECIDO

5. Processamento

5.1. SUBSTITUIR A ÁGUA QUE SE ENCONTRA NOS TECIDOS POR UM MEIO MAIS SÓLIDO (PARAFINA)

5.1.1. DESIDRATAÇÃO

5.1.1.1. COMPLETA REMOÇÃO DA ÁGUA POR AGENTES DESIDRATANTES

5.1.1.1.1. ETANOL

5.1.2. CLARIFICAÇÃO

5.1.2.1. RETIRADA DO ETANOL COM XYLOL

5.1.2.1.1. PENETRAÇÃO DA PARAFINA COMPLETAMENTE NO INTERIOR DOS TECIDOS

5.1.3. INFILTRAÇÃO

5.1.3.1. SATURAÇÃO DAS CAVIDADES DOS TECIDOS E CÉLULAS POR MEIO INFILTRANTE

5.1.3.1.1. PARAFINA LÍQUIDA

5.2. MANUAL

5.2.1. MONITORAR A CONCENTRAÇÃO DOS REAGENTES PERIODICAMENTE

5.3. AUTOMÁTICO

5.3.1. OTIMIZAÇÃO DO TEMPO

5.3.1.1. 2 TIPOS

5.3.1.1.1. O CARROSSEL

5.3.1.1.2. E O DE TRANFERÊNCIA DE FLUÍDO

6. MICRÓTOMO COM CORTES DE 1 A 60 MICRÔMEROS

6.1. NAVALHAS DE

6.1.1. DESCARTÁVEIS

6.1.1.1. MELHOR QUALIDADE

7. 1 PASSO: LÂMINAS DEVEM SER IDENTIFICADAS, LAVADAS E SECADAS

8. 7 PASSO: LEVAR OS CORTES PARA A ESTUFA ( MÍN. 2HORAS)

8.1. 8 PASSO: PASSAR OS BLOCOS NA PARAFINA PARA CORRETO ARMAZENAMENTO

9. OS BLOCOS SERÃO SECCIONADOS EM FATIAS FINAS PERMITINDO A VISUALIZAÇÃO DAS CÉLULAS E ELEMENTOS EXTRACELULARES

9.1. 2 PASSO: RETIRAR O EXCESSO DE PARAFINA DO BLOCO COM UMA NAVALHA VELHA

9.1.1. 3 PASSO: RESFRIAR O BLOCO PARA O CORTE

9.1.1.1. 4 PASSO: FAZER OS CORTES COM UMA NAVALHA NOVA

9.2. PROFISSIONAL TREINADO E EQUIPAMENTOS ESPECÍFICOS

9.2.1. CUIDADOS DE EXECUÇÃO DE CORTE DE QUALIDADE

10. NÚCLEO EM AZUL E CITOPLASMA EM RÓSEO

10.1. MECANISMO FÍSICO

10.2. MECANISMO QUÍMICO

10.2.1. HEMATOXILINA E EOSINA

10.2.1.1. HEMATOXILINA DE HARRIS

10.2.1.1.1. COLORAÇÃO REGRESSIVA QUE NECESSITA DE DIFERENCIAÇÃO

10.2.1.2. HEMATOXILINA DE MAYER

10.2.1.2.1. COLORAÇÃO PROGRESSIVA QUE NÃO NECESSITA DE DIFERENCIAÇÃO

11. Inclusão

11.1. TECIDO INSERIDO EM MOLDE COM PARAFINA FUNDIDA PARA A SOLIDIFICAÇÃO DO MESMO

11.1.1. 2 MÉTODOS

11.1.1.1. MANUAL

11.1.1.1.1. PARAFINA RETIRADA DA ESTUFA

11.1.1.2. EQUIPAMENTO

11.1.1.2.1. CENTRAIS DE INCLUSÃO

12. Microtomia

13. Coloração

13.1. OS CORTES DEVEM SER CORADOS PARA TORNÁ-LOS VISÍVEIS AO MICROSCÓPIO

13.1.1. SOLUÇÕES CORANTES

13.1.2. 1 PASSO: DESPARAFINAÇÃO

13.1.2.1. 2 PASSO: HIDRATAÇÃO

13.1.2.1.1. 3 PASSO: COLORAÇÃO

14. Selagem

14.1. ACONDICIONAR AS LÂMINAS EM UM MEIO PERMANENTE

14.1.1. GOMA DE DAMAR

14.1.1.1. E RECOBRIR A LÂMINA COM UMA LAMÍNULA PARA TORNAR A SUPERFÍCIE PLANA

15. Observação ao microscópio

15.1. TODAS ETAPAS DEVEM SER BEM FEITAS PARA QUE AS LÂMINAS ESTEJAM PREPARADAS PARA SUA LEITURA NO MICROSCÓPIO

16. 5 PASSO: COLOCAR AS FITAS EM BANHO FRIO

16.1. 6 PASSO: TRANSFERIR AO BANHO MARIA

17. AÇO PERMANENTE

17.1. DURABILIDADE