1. Referencias:
1.1. Bodor G. S. (2016). Biochemical Markers of Myocardial Damage. EJIFCC, 27(2), 95–111.
1.2. López Silva, S. (2019). ¿Qué exámenes de laboratorio me debo realizar? Recuperado el 15 de septiembre del 2021. México. http://fmdiabetes.org/wp-content/uploads/2019/04/Qu%C3%A9-ex%C3%A1menes-de-laboratorio-me-debo-realizar.pdf
1.3. Fuentes, D., Dominguez Lantigua, ;, & Aicart, M. (2017). Avances en medición de la glucosa: del glucómetro tradicional al sistema flash. Panorama Actual Del Medicamento, 41(402), 360–363. https://gruposdetrabajo.sefh.es/gps/images/stories/publicaciones/pam_2017 402_19_360-363.pdf
2. Laboratorio de diabetes
2.1. Anticuerpos contra los islotes
2.1.1. Función
2.1.1.1. Marcador para DM 1
2.2. Péptido C sérico
2.2.1. Formado durante la conversión de proinsulina en insulina.
2.2.2. Se libera a la circulación en cantidades equimolares a la insulina.
2.2.3. Uso
2.2.3.1. Calcular los niveles de insulina en presencia de anticuerpos contra la insulina exógena.
2.2.3.2. Diagnóstico de hipoglucemia facticia.
2.2.4. Valores
2.2.4.1. ↑
2.2.4.1.1. Insulinoma
2.2.4.1.2. DM2
2.2.4.2. ↓
2.2.4.2.1. Administración de insulina exógena.
2.2.4.2.2. DM1
2.3. Glucoalbúmina
2.3.1. Semivida de 14 días.
2.3.2. Uso
2.3.2.1. Controlar el grado de hiperglucemia durante 1-2 semanas anteriores cuando no se puede usar la hemoglobina glucosilada.
2.4. Tipos
2.4.1. 1
2.4.1.1. Carácter autoinmune.
2.4.1.2. Desencadenada en edades tempranas.
2.4.1.3. Por deficiencia absoluta de la secreción de insulina.
2.4.1.4. Puede cursar con cetoacidosis.
2.4.2. 2
2.4.2.1. Es la más frecuentes.
2.4.2.2. Etiología
2.4.2.2.1. Aparición de resistencia de insulina.
2.4.2.2.2. Déficit de secreción de insulina.
2.4.2.2.3. Desencadenada en edades adultas.
2.4.2.2.4. Factores de riesgo
2.4.2.3. No debuta con cetoacidosis.
2.5. Diagnóstico
2.5.1. Sintomatología
2.5.1.1. Poliuria
2.5.1.2. Polifagia
2.5.1.3. Polidipsia
2.5.2. Alguno de los criterios
2.5.2.1. Valores repetidos de glucemia en ayunas ≥126 mg/dl
2.5.2.2. Glucemia aleatoria ≥200 mg/dl
2.5.2.3. Glucemia ≥200 mg/dl a las 2 horas de la prueba de tolerancia oral a la glucosa (75 g de estímulo de glucosa).
2.5.2.4. Valor de HbA1c ≥6.5%
2.5.3. Deben confirmarse por segunda vez excepto cuando haya una descompensación metabólica aguda.
2.6. Pruebas
2.6.1. Tolerancia a la glucosa
2.6.1.1. Uso
2.6.1.1.1. Evaluar síndromes de resistencia extrema a la insulina.
2.6.1.1.2. Evaluar el déficit de la hormona del crecimento.
2.6.1.2. Valores
2.6.1.2.1. Desciende la glucosa al 50% del nivel en ayunas en 20-30 minutos.
2.6.1.2.2. Regresa a su nivel en ayunas en 90-120 minutos.
2.6.1.2.3. Interpretación
2.6.1.3. Administración intravenosa de 0.1 unidad de insulina/kg de peso corporal.
2.6.2. Tolerancia oral de la insulina (POTG)
2.6.2.1. Fundamento
2.6.2.1.1. El organismo no puede metabolizar una gran sobrecarga de glucosa en cierto tiempo y así permanecerá la hiperglucemia.
2.6.2.2. Uso
2.6.2.2.1. Mujeres con diabetes gestacional.
2.6.2.2.2. Glucemia basal normal pero con factores de riesgo de padecer DM.
2.6.2.2.3. Sospecha de diabetes mellitus con alteración de la glucemia en ayunas.
2.6.2.2.4. Pacientes con niveles plasmáticos límites de glucosa en ayunas (110-140 mg/gl).
2.6.2.3. Preparación del paciente
2.6.2.3.1. Insuficiencia corticosuprarrenal.
2.6.2.3.2. Suspender 3 días previos la ingesta de medicamentos que alteren la prueba
2.6.2.3.3. En régimen ambulatorio
2.6.2.3.4. Paciente en ayuno de 12 horas.
2.6.2.3.5. Antes de las 9 am.
2.6.2.3.6. 3 días antes debe haber seguido una dieta rica en carbohidratos (>150 g/día).
2.6.2.3.7. Permanecer en reposo, no consumir café, té, alimentos ni alcohol.
2.6.2.3.8. No haber fumado.
2.6.2.4. Procedimiento
2.6.2.4.1. Realizar una extracción de la glucemia basal.
2.6.2.4.2. Se administran 75 gr de glucosa oral. Disolverse en 400 ml de agua y tomarse en menos de 5 minutos.
2.6.2.4.3. Después de 2 horas realizar otra extracción de glucemia.
2.6.2.4.4. En el embarazo se realiza la extracción 2 y 3 horas después.
2.6.2.5. Contraindicaciones
2.6.2.5.1. Diabéticos ya diagnosticados.
2.6.2.6. Interpretación
2.6.2.6.1. Normal
2.6.2.6.2. Intolerancia a los carbohidratos
2.6.2.6.3. Diabetes mellitus
2.6.3. Glucosa posprandial (GPP)
2.6.3.1. Medida de la cantidad de glucosa en la sangre en pacientes 2 horas después de ingerir alimentos.
2.6.3.1.1. Indicaciones
2.6.3.1.2. Valores
2.6.3.1.3. Resultados
2.6.3.1.4. Factores de interferencia
2.6.3.1.5. Condiciones del paciente
2.6.3.1.6. Durante la prueba
3. Glucómetro
3.1. Usos
3.1.1. Control crónico de la glucosa para la DM.
3.1.2. Control de la hipoglucemia en el recién nacido.
3.1.3. Análisis de la glucosa en sangre a pie de cama.
3.2. Ventajas
3.2.1. Es el método de control más confiable.
3.2.2. Fácil manejo
3.2.2.1. Dejar caer una gota de sangre sobre una tira de reactivos para que sea absorbida.
3.2.2.2. Introducir la tira al medidor de reflectancia.
3.2.2.3. Seguir los pasos recomendados por el fabricante.
3.2.3. El resultado se obtiene de 3-10 segundos.
3.2.4. Cuesta una vigésima parte de lo que cuesta la medición de glucosa en el laboratorio.
3.3. Desventajas
3.3.1. Los medidores caseros deben verificarse en intervalos regulares.
3.3.2. Un tercio de las lecturas son erróneas.
3.4. Valores
3.4.1. Los valores de glucosa en sangre total son un 15% inferiores a los valores de glucosa en suero como resultado de una mayor dilución.
3.4.2. Valores
3.5. Antes del uso...
3.5.1. Verificar que el hematocrito del paciente esté dentro del rango para el cual la marca está diseñada para ser precisa.
3.5.1.1. Fuera del rango
3.5.1.1.1. Realizar prueba de glucosa en sangre.
3.5.2. Verificar que el glucómetro haya sido calibrado.
3.5.3. Leer las instrucciones para el uso específico de del medidor de reflectancia.
3.6. Método
3.6.1. Capilar
3.6.1.1. Limpiar la cara lateral de la falange distal del dedo con una toallita con alcohol y dejar secar la zona.
3.6.1.2. Con una lanceta de 2.5 mm pinchar la cara lateral. Limpiar la primera gota de sangre con una gasa estéril.
3.6.1.3. Sosteniendo la zona de punción, dejar acumular una segunda gota de sangre y que caiga sobre la tira reactiva.
3.6.2. Venoso
3.6.2.1. Obtenga una muestra de sangre venosa de 4 mL en una jeringa o en un tubo con tapa verde.
3.6.2.2. Cubrir completamente la almohadilla de la tira reactiva con una gota de la muestra de sangre.
3.6.2.3. Siga las instrucciones del medidor de reflectancia específico que se esté utilizando.
3.6.3. Interferencias
3.6.3.1. No dejar secar la piel después de haberla limpiado con alcohol.
3.6.3.2. No seguir las instrucciones de sincronización exactamente como lo recomienda el fabricante.
3.6.3.3. Fármacos.
4. Hb glucosilada (HbA1c)
4.1. Indicaciones
4.1.1. Diagnosticar y dar seguimiento a la diabetes.
4.1.2. Proporcionar un índice preciso a largo plazo del grado de glucemia del paciente.
4.1.3. Índice de control diabético.
4.1.3.1. Relación entre un mal control y aparición de complicaciones.
4.2. Combinación de glucosa con hemoglobina.
4.2.1. Irreversible
4.2.2. Continua
4.2.3. Durante la vida de los hematíes (120 días).
4.2.4. Proporcional al nivel de glucosa durante las 6-12 semanas anteriores.
4.3. Valores
4.3.1. 4-8%
4.3.1.1. Interpretación
4.3.1.1.1. En pacientes diabéticos
4.3.1.1.2. ↑
4.3.1.1.3. ↓
5. Enzimas cardiacas
5.1. Creatinina fosfocinasa (CPK)
5.1.1. Enzima que es un dímero compuesto por 2 subunidades.
5.1.1.1. M
5.1.1.2. B
5.1.1.3. Isoenzimas
5.1.1.3.1. BB o 1
5.1.1.3.2. MB o 2
5.1.1.3.3. MM o 3
5.1.1.4. Permiten saber la procedencia de la lesión.
5.1.2. Su función es catalizar la transferencia de fosfato de alta energía entre creatinina y fosfocreatinina, entre ADP y ATP.
5.1.3. Especificidad baja.
5.1.4. Valores
5.1.4.1. Mujeres
5.1.4.1.1. 45-135 U/l
5.1.4.2. Hombres
5.1.4.2.1. 55-170 U/l
5.1.4.3. ↑
5.1.4.3.1. Infarto agudo al miocardio
5.1.4.3.2. Atrofia, inflamación o necrosis del músculo esquelético.
5.1.4.3.3. Infarto cerebral extenso
5.1.4.3.4. Consumo de sustancias químicas
5.1.4.4. ↓
5.1.4.4.1. Desnutrición
5.1.4.4.2. Vejez
5.1.4.4.3. Artritis reumatoide.
5.2. Troponina
5.2.1. Proteínas presentes en fibras musculares miocárdicas que controlan la interacción entre la actina y miosina del músculo.
5.2.1.1. Subunidades
5.2.1.1.1. TnC
5.2.1.1.2. TnI
5.2.1.1.3. TnT
5.2.2. Marcadores bioquímicos de elección en el diagnóstico de IAM.
5.2.2.1. ↑ especificidad ↑sensibilidad
5.2.3. Valores
5.2.3.1. 10 ng/l Troponina T
5.2.3.2. 40 ng/l Troponina I
5.2.3.3. Troponina C
5.2.3.3.1. No se mide porque tiene la misma secuencia de la troponina del músculo liso.
5.2.3.4. ↑
5.2.3.4.1. Necrosis isquémica miocárdica aguda
5.2.3.4.2. Necrosis miocárdica por contusión.
5.2.3.4.3. Necrosis miocárdica por inflamación.
5.2.3.4.4. Edema agudo del pulmón.
5.2.4. Normalmente no se encuentran en la circulación.
5.2.5. Aumentan a partir de las 4 horas iniciado el dolor .
5.2.5.1. Persisten elevadas por varios días.
5.2.5.1.1. TnI
5.2.5.1.2. TnT
5.2.6. Método
5.2.6.1. Referencia
5.2.6.1.1. ELISA
5.2.6.2. Alternativo
5.2.6.2.1. Anticuerpo monoclonal "emparedado"
5.2.6.3. Interferencias
5.2.6.3.1. Paciente dializado
5.3. Mioglobina
5.3.1. Proteína heme de pequeño tamaño
5.3.1.1. Mayor afinidad al oxígeno.
5.3.1.2. Reservorio de oxígeno en el miocito.
5.3.2. Valor
5.3.2.1. 90 ng/ml
5.3.2.1.1. Elevación
5.3.3. Presente en el músculo cardiaco cardiaco y esquelético.
5.3.4. Marcador sensible de lesión cardiaca.
5.3.5. Detectada en suero a las 2 horas de iniciado el infarto.
5.3.6. Depurada rápidamente, con vida media de 10 minutos. Y liberada velozmente.
5.3.6.1. Patrón staccato (línea azul)
5.3.7. Si es usada como marcador único, debe obtenerse la muestra de sangre con separación de dos horas.