1. Resultados
1.1. Resultados de mesofílicos aerobios
1.1.1. Para considerar una calidad deficiente del agua en cuanto a este parámetro en el presente estudio se tomo como criterio cuentas iguales o mayores a 200 UFC/mL de agua, encontrándose que en la Aduana el 47 % (40 muestras) lo sobrepasaron, en Etchojoa un 12 % (10 muestras) presentaron cuentas elevadas. Ejido Melchor Ocampo un 38 % (32 muestras) no cumplieron con el criterio.
1.1.1.1. El agua de pozo de la comunidad de la Aduana y el Ejido Melchor Ocampo presentan problemas serios de contaminación por microorganismos, ya que en 10 de los sitios de tomas domiciliarias se presentaron porcentajes mayores al 40 % de muestras con conteos altos (> 200 UFC/mL)
1.1.1.2. En el caso de los pozos (sito 1) la incidencia fue baja, ya que sólo 2 muestras sobrepasaron el criterio.
1.1.2. La comunidad de Etchojoa presentó densidades bajas de mesofílicos aerobios
1.2. Resultado de coliformes totales
1.2.1. Aduana y el Ejido Melchor Ocampo presentaron densidades altas de coliformes totales, con el 100 % (84 muestras) y 97 % (82 muestras) de las muestras fuera de norma, respectivamente; los cuales deben ser ausentes en 100 mL
1.2.2. Etchojoa sólo el 6 % de las muestras presentaron incidencia, lo cual se atribuye al proceso de desinfección con cloro
1.3. Resultado de Coliformes Fecales
1.3.1. Aduana y el Ejido Melchor Ocampo presentaron densidades altas de coliformes fecales, con el 99 % (83 muestras) y 86 % (72 muestras) de las muestras fuera de norma, respectivamente; los cuales deben ser ausentes en 100 mL
1.3.2. Etchojoa sólo el 6 % de las muestras presentaron incidencia, lo cual se atribuye al proceso de desinfección con cloro
1.4. Salmonella spp. y Vibrio spp.
1.4.1. El 100 % de las muestras analizadas en las comunidades de la Aduana, Etchojoa y el Ejido Melchor Ocampo fueron negativas para Salmonella spp. y Vibrio spp
2. Conclusiones
2.1. Los resultados del presente estudio dan una idea del alto riesgo para los consumidores del consumo de agua de pozo en las comunidades de la Aduana y el Ej. Melchor Ocampo debido a la contaminación fecal, la cual puede ser la causa de las gastroenteritis frecuentes en la población.
2.2. Una adecuada desinfección del agua disminuye en gran medida los riesgos microbiológicos del consumo de agua de pozo
2.3. Es necesaria la participación de autoridades correspondientes en el adecuado control de la calidad del agua en las comunidades rurales.
3. Referencia
3.1. Fuentes, A., Campas, O., Aguilar, M., & Meza, M. (2007). Calidad microbiológica el agua de consumo humano de tres comunidades rurales del sur de Sonora (México). RESPYN Revista de Salud Humana y Nutrición, 8(3), 1-13. Recuperado de http://www.respyn.uanl.mx/viii/3/articulos/calidad_de_agua.htm
4. Agua
4.1. Elemento vital para la existencia humana
4.2. 88% de las enfermedades diarreicas son producto de un abastecimiento de agua insalubre
4.3. Vehículo de agentes patógenos causales de enfermedades en el ser humano
4.3.1. Bacterias
4.3.1.1. Vibrio cholerae Salmonella typhi Yersinia enterocolitica
4.3.2. Virus
4.3.2.1. Virus de la Hepatitis A y Norwalk
4.3.3. Protozoos
4.3.3.1. Giardia lamblia Entamoeba histolytica Criptosporidium parvum
5. Materiales y métodos
5.1. Muestreo
5.1.1. Se recolectaron las muestras mensualmente
5.1.1.1. Frascos de vidrio estériles de 500 ml
5.1.1.2. Se dejo correr el agua por 5 min
5.1.1.3. Se lleno los frascos a 3/4 de su capacidad
5.1.1.4. Se trasporto las muestras a 4°C en hielo
5.2. Preparación de las muestras
5.2.1. Homogenizacion de las muestras
5.2.2. Diluciones decimales
5.2.2.1. Determinación de Mesófilos Aerobios
5.2.3. No diluciones para
5.2.3.1. Coliformes totales Coliformes fecales Vibrio spp Salmonella spp
5.3. Análisis
5.3.1. Mesófilos aerobios
5.3.1.1. Técnica por vaciado en placa
5.3.1.1.1. Contar las colonias que se desarrollan en Standard Methods Agar
5.3.1.1.2. 48 horas a 35 -+ °C
5.3.1.2. Se homogeneizo la muestras por agitación
5.3.1.3. Siembra
5.3.1.3.1. Directa
5.3.1.3.2. Y de las diluciones seriadas hasta 10^-5
5.3.1.4. Reporte
5.3.1.4.1. UFC/ml de muestra
5.3.2. Coliformes Totales y Fecales
5.3.2.1. Tecnica
5.3.2.1.1. Tubos de fermentación múltiple (diluciones en tubo) del NUMERO MAS PROBABLE (NMP)
5.3.2.1.2. Se inocularon 10ml de muestra de agua de pozo
5.3.2.1.3. En 5 tubos de 10 ml de caldo lactosa doble concentración
5.3.2.1.4. 2 tubos de 10 ml de caldo lactosa simple concentración
5.3.2.1.5. Se adicionó 1.0 y 0.1 ml de muestra respectivamente
5.3.3. Determinación de Salmonella spp.
5.3.3.1. Pre-enriquecimiento en caldo selenito cistina y caldo tetrationato
5.3.3.1.1. inoculando 15ml de muestra de agua
5.3.3.1.2. Incubación a baño maría a 44°C de 18 a 24 horas
5.3.3.2. Se re-sembró en medios selectivos
5.3.3.2.1. Agar Salmonella-sHIGELLA
5.3.3.2.2. Agar Mac Conkey
5.3.3.2.3. Agar Xilosa-Lisina-Desoxicolato
5.3.3.3. Confirmación de las colonias sospechosas con
5.3.3.3.1. Pruebas de
5.3.4. Determinación de Vibrio spp
5.3.4.1. Pre-enriquesimiento
5.3.4.1.1. en Caldo peptona alcalina
5.3.4.1.2. Inoculando 25 ml de la muestra
5.3.4.1.3. Incubación a 35-+ 1°C
5.3.4.2. Siembra en medio selectivo
5.3.4.2.1. Agar Tiosulfato-Citrato-Bilis-Sacarosa
5.3.4.3. Confirmación de las colonias
5.3.4.3.1. Se identificaron realizando las pruebas de la oxidasa, catalasa Resiembra en caldo nutritivo al 0, 3, 6, 8 y 10 % de NaCl, Fermentación de glucosa Fermentación de la lactosa Fermentación del manitol Fermentación de la sacarosa Producción de indol Prueba del rojo de metilo Voges Proskauer, Hidrólisis de la urea Hidrólisis de la gelatina Aprovechamiento del citrato Reacción oxidativa-fermentativa (OF), Movilidad, Producción de H2S.