Técnicas colorimétricas para identificación de carbohidratos

1. Método de Molish

1.1. Se agregó el reactivo y se mezcló por vórtex

1.2. Se adicionó H2S04 concentrado por estratificación y lentamente procurando formar dos fases

2. Método de Seliwanoff

2.1. Se agregó el reactivo, permitir desarrollo por 2 min a baño maría

2.2. La aplicación de un precipitado rojo indica prueba positiva

3. Método de Fehling

3.1. Se agregaron reactivos de Fehling A y B cuadro 7

3.1.1. New vocabulary

3.2. Se permitió el desarrollo de color por 10 min a baño maría

4. Método de Dubois

4.1. Se prepararon los tubos respecto al cuadro 6 en duplicado.La curva de calibración a partir de una solución estándar de dextrosa máxima de 1mg/mL

4.1.1. Research and prepare experiment

4.2. Se permitió el desarrollo de color por 10 min a temperatura ambiente

4.3. Se leyeron los tubos por espectofotometría a 490nm. Se utilizaron celdas de cuarzo y tubo 0 como blanco

5. Preparación de la muestra

5.1. Se realizaron diluciones decimales (0.1 a 1.0 mg/ml.

6. Método de Miller

6.1. Se agregaron reactivos en orden (cuadro 5).

6.2. La curva de calibración se elaboraró a partir de una solución estándar de dextrosa con una concentración máxima de 1 mg/mL

6.3. La adición del reactivo Miller se efectuó en la cámara de extracción.Posteriormente se agitaron inmediatamente los tubos por vortex

6.4. Se permitió el desarrollo de color por 10 mint en baño maría.Se agregaron 3 gtas de agua destilada y se mezcló

6.5. Se leyeron tubos por espectofotometría a 550 nm.

7. Método de Lugol

7.1. Se preparó la muestra con lugo pero no se obtuvo la aparición de coloración azul indica prueba positiva para almidón