Resistencia a la meticilina y producción de biopelícula en aislamientos clínicos de Staphylococcu...

1. Prueba de difusión en disco para oxacilina y cefoxitina

1.1. meticilina se determinó mediante el método de Kirby y Bauer

1.2. incubaron durante 24 horas a 37 °C

1.3. CLSI

2. Producción de Biopelícula

2.1. método de titulación en microplaca de poliestireno utilizando cristal violeta

2.2. spectrofotómetro a una absorbancia de 570 nm

2.3. Cuando el valor obtenido de absorbancia resultó negativo, se consideró como valor cero; cualquier valor positivo indicaba que había producción de biopelícula

2.4. todas las cepas produjeron biopelícula cuando se empleó la cepa ATCC 27543 como control positivo para dicha producción

3. RESULTADOS

3.1. las dos variables fueron independientes entre sí (asociación entre la producción de biopelícula y los dos grupos de cepas

3.2. Las cepas SARM presentaron el mismo rango de sensibilidad y especificidad frente a los dos antibióticos.

3.3. correlación entre el fenotipo y el genotipo de resistencia a la meticilina;

3.4. únicamente en una cepa de fenotipo SARM no se encontró el gen mecA

3.5. Las cepas de S. aureus aisladas de la piel de pacientes presentaron una mayor capacidad de producir biopelícul

3.6. El operón ica es un elemento importante en la formación y acumulación de biopelícula

4. Las cepas de SARM se asocian con infecciones hospitalarias en las que se se pueden formar biopelículas

5. Metodología

5.1. 11 cepas de S. aureus y 12 de Staphylococcus coagulasa negativa.

5.2. iscos de cefoxitina CLSI

5.3. genes mecA e icaADBC se identificaron mediante reacción en cadena de la polimerasa (PCR)

6. Resultados

6.1. Nueve cepas de S. aureus fueron resistentes a la meticilina (SARM)

6.2. dos fueron sensibles

6.3. Ocho cepas de Staphylococcus coagulasa negativa fueron resistentes

6.4. cuatro fueron sensibles

6.5. Genotipos

6.5.1. mecA

6.5.1.1. ocho de las nueve cepas de S. aureus

6.5.1.2. seis de las ocho de Staphylococcus coagulasa negativa resistentes a meticilina

6.5.1.3. FORMACIÓN DE BIOPELÍCULA

6.5.2. icaADCB

6.5.2.1. No se encontró asociación entre la resistencia a meticilina

6.5.2.2. NO SE FORMÓ BIOPELÍCULA

6.5.2.3. Diez cepas de S. aureus y 11 de Staphylococcus coagulasa negativa presentaron el genotipo

7. Factores de riesgo para la infección

7.1. ospitalización durante periodos prolongados

7.2. procedimientos preoperatorios

7.3. utilización de catéteres o prótesis

7.4. permanencia en lugares de alto riesgo

7.5. virulencia

7.6. potencial para formar abscesos

7.7. multirresistencia a los antibióticos

8. Mecanismos de resistencia de S. aureus β-lactámicos

8.1. producción de enzimas β-lactamasas

8.2. presencia de proteínas ligadas a la penicilina

8.3. modificadas (conocida como resistencia intrínseca a la meticilina)

8.4. enómenos de tolerancia

9. Formación de Biopelículas

9.1. factor de virulencia

9.2. comunidad de microorganismos recubiertos de un polímero extracelular o matriz de exopolisacáridos, con la capacidad de adherirse a superficies bióticas o abióticas

9.3. La matriz de exopolisacáridos favorece el intercambio de metabolitos con el exterior y confiere una barrera protectora contra ambientes adversos

9.4. adhesina intercelular de polisacáridos PNAG

9.5. tolerancia a los agentes antimicrobianos en el 60 % de las infecciones bacterianas está asociada a la formación de biopelículas

9.6. Las cepas de SARM se asocian con infecciones hospitalarias en las que se se pueden formar biopelículas